多种干货多糖含量测定及抗氧化性的研究毕业论文(编辑修改稿)内容摘要:

温烘干,用粉碎机粉碎,用40目筛筛取, 留着备用。 无水乙醇,邻苯三酚,双氧水,邻菲罗啉,磷酸盐 生理盐水缓冲溶液(用分析天平称 , , 酸氢二钾,溶于 800mL蒸馏水中,用盐酸调节溶液 pH为 ,然后加蒸馏水定容到 1L),硫酸亚铁,葡萄糖为国产分析纯,蒸馏水,维生素 C 溶液,蒽酮 硫酸溶液(称量 ,加入 100mL、质量分数 98%的浓硫酸溶液,摇匀,放在棕色试剂瓶中,低温保存),无水丙酮, TrisHCl( pH=, )缓冲溶液 (称取 25gTris试剂溶于蒸馏水中,加 8mL浓盐酸溶液,然后定容至 1L,高 压、 高 温 灭菌后室温下保存)。 实验器材 RE52AA 旋转蒸发器(上海亚荣生化仪器厂)、 AL104电子分析天平 (瑞士梅特勒托利多仪器有限公司)、 UV1100紫外 可见分光光度计(上海美普达仪器有限公司)、离心机、 SHA水浴恒温振荡器(江苏省金坛市医疗器械有限公司)、 PHS3C型 pH计(上海天达仪器有限公司)、 真空抽滤机、 DF101干燥箱、锥形瓶、吸量管 (1mL、 2mL、 5mL)、洗耳球、比色管、容 量瓶。 实验方法 粗多糖提取的方法 多糖的提取一般有超微波辅助法、微波辅助法、酶法、热水浸提法。 本文所用的是热水浸提法。 它的原理是在热力作用下,细胞的质壁分离。 水溶剂渗入到细胞质、细胞壁中,溶解了液泡里的物质,并且通过细胞壁扩散到外部。 取一定量预处理过的样品,按 1:10的料液比加入 95%( V/V)的乙醇,低温浸泡 12h。 过滤,滤渣按一定的料液比加入蒸馏水,热水浴中保温一定时间。 减压 抽滤得到滤液,滤渣二次浸提,合并滤液,用旋转蒸发仪浓缩至原来体积的 1/4,加入 3倍于浓缩液的 95%( V/V)乙醇, 3℃ 下放置过夜,密封 好 ,当有粒状沉淀和絮状胶状物产生后,用离心机以 30分钟、 3000r/min去上清液,沉淀复溶再离心、抽滤后,用无水丙酮、乙醇 多次 洗涤,干燥得到样品的粗多糖提取物,备用。 多糖提取率 =多糖质量 /样品质量 100% 标准曲线的绘制 [6] 先打开紫外分光光度计进行预热。 清洗七个比色管,干燥编号备用。 然后用分析天平称取 5 糖,蒸馏水溶解后,完全转移到 100mL容量瓶进行定容,得 糖标准溶液。 然后用 1mL的吸量管分别移取 、 、 、 、 、 的葡萄糖标准溶液于干燥的比色管中,再用 2mL的吸量管分别移取 、 、 、 、 ,补至。 将七个比色管放在冰水浴中,用 5mL的吸量管迅速移取 硫酸溶液分别加入比色管内,摇匀。 然后将 7个比色管放在沸水浴中加热 10分钟后,取出来,放在盛有自来水的大烧杯中冷却至室温。 用紫外分光光度计从低浓度到高浓度在 625nm波长下,分别测定它们的吸光度。 记下数据,以吸光度为纵坐标、葡萄糖浓度为横坐标,用 excel绘制葡萄糖溶液的标准曲线,得到相关系数和回归方程。 多糖含量 的 测定方法 用电子天平称取样品粗多糖提取物 ,三份,蒸馏水溶解后,完全转移到 100mL容量瓶中 并 且摇匀定容。 移取 25mL的比色管中,再移取 ,将比色管放入冰水浴中,迅速加 蒽酮 硫酸溶液,摇匀。 然后放在沸水浴中加热 10分钟,取出,放在乘有自来水的大烧杯中冷 却至室温。 以 蒸馏水 为参比,迅速用紫外分光光度计在 625nm的波长下,测得它的吸光度,然后代入回归方程求出多糖的浓度,并且算出多糖在样品粗提取物中的含量。 多糖对 羟基自由基 (OH)消除作用的测定方法 [7] 本文采用的是用 Fenton法反应形成羟基自由基的体系。 Fe2+ 与 H2O2 在Fenton反应中产生羟基自由基的方程式如下:  222 FeOH ===   3FeOHOH 向该反应体系中加入邻菲罗啉,由于羟基自由基活性很高 , 能够很有效的被邻菲罗啉所结合,产生有色物质。 有色物质在 510nm处有最大吸收。 当加入多糖溶液后,多糖溶液就会与羟基自由基结合,减少了邻菲罗啉与羟基自由基结合而生成的有色物质,减弱了在 510nm处的吸光值。 通过测定添加了多糖溶液的体系的吸光度来判断它的消除能力。 方法如下: 首先用分析天平精确称量提取的样品粗多糖沉淀 ,用蒸馏水溶解后,在 100mL的容量瓶中定容,配成浓度为 ,取母液进行稀释 至浓度为 、 、 、 、。 配制维生素 C溶液用同样的方法。 取 6支干燥且干净的比色管,依次编号、分别向里面加入 溶液,磷酸盐 生理盐水( pH=)缓冲溶液 , 和 、 、 、 、 (注: 1号为空白对照,用蒸馏水代替多糖溶液)。 再加 ,迅速摇匀,再加 %的过氧化氢溶液 , 将五支比色管放在 38℃ 的 热水浴中反应 1小时,然后迅速测定 6 各管在 510nm下的吸光度。 再将维生素 C药片研磨,称取,配制同浓度的维生素C溶液作对比。 清除率的计算: OH清除率 =(A0A样品 )/A0 100% 多糖对超氧自由基( O 2)消除作用的测定方法 [8] 对超氧阴离子清除采用的是邻苯三酚自氧化法。 邻苯三酚可以在碱性条件下发生自身氧化生成超氧自由基( O 2)、以及红色中间物质。 超氧自由基能够加速邻苯三酚的氧化速率,如果有清除剂的加入,会消除 O 2 ,减少了红色中间产物的积累,降低了在 310nm处的吸光度。 通过测定加入多糖溶液的体系的吸光度来判断它的消除能力。 方法如下: 取 6支干燥且干净的比色管,依次编号、分别向里面加入 、TrisHCl( pH=, )缓冲溶液 , 放在 25℃ 的热水浴中 25分钟,然后向比色管中依次加入 、 、 、 、 、 (注: 1号管为空白对照,用蒸馏水代替多糖溶液)。 迅速加入在 25℃ 热水浴中预热 20分钟的邻苯三酚( ) ,摇匀。 放置在 20℃ 水浴槽中反应 5分钟,最后加入 HCL( 8mL/L)溶液结束反应。 将各管在 310nm处测定它的吸光度,再将维生素 C药片研磨,称取,配制同浓度的维生素 C溶液作对比。 清除率计算: O 2 清除率 =(A0A样品 )/A0 100% 2 结果与分析 干木耳粗多糖提取的条件优化及含量的测定 多糖在热水提取的过程中,有许多因素会影响多糖提取率。 本文针对浸提料液比、温度、时间这三个条件进行探究 [9]。 浸提时 间对多糖提取的影响 固定温度为 85℃ 、料液比 1:30不变。 时间为 、 、 、 ,根据 ,结果如下: 表 21 浸提时间对多糖提取率的影响 时间 /h 1 2 3 4 提取率 /% 由结果得出,随着时间的增 大 ,提取率先增 大 后减小。 当浸提时间为 ,提取率最大,继续增加时间,提取率开始下降。 浸提温度对多糖提取的影响 固定浸提时间为 ,料液比 1:30不变。 温度为 50、 60、 70、 7 80、 890、 95℃。 根据 ,结果如下: 7 表 22 浸提温度对多糖提取率的影响 温度 /℃ 50 60 70 75 80 85 90 95 提取率 /% 由上表中数据表明,随着温度的升高,多糖的提取率也会随之增加。 但是过高温度会分解多糖,多糖的活性受到影 响,所以我们选择 90℃ 作为我们的浸提温度。 浸提 料液比对多糖提取率的影响 由表 2表 22可知,固定浸提时间为 ,浸提温度为 90℃ 不变。 料液比分别 1: 1: 1: 1:50、 1:60、 1:70。 根据 ,结果如下:。
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